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4种ELISA检测技术的区别在哪儿?速速详解

2024-08-09 10:41:50
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ELISA实验的基础是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶标记,然而根据试剂的来源和标本的性状及检测的具备条件,可以设计出不同类型的检测方法。

今天,我们就综合整理了以下4种常见的ELISA检测方法,并从原理、优缺点、适用范围及注意事项这几方面进行区分,结合图文来了解一下吧~ 

1. 直接ELISA检测

 

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 原理:将抗原固定在微孔板上,使用酶标抗体孵育抗原,最后加入酶反应的底物进行显色反应,显色产生信号与所结合的分析物量成正比。

优缺点:优点是操作简单快捷(ELISA检测中步骤最简单的一种),并且可以消除二抗的交叉反应;缺点是抗原固定不明确会导致潜在的高背景干扰,酶对一抗偶联物的免疫反应性可能会产生不利影响,一抗必须单独标记,费时又费钱。

适用范围:评估抗体的亲和力和特异性,研究阻断/抑制的相互作用。

注意事项:实验过程中的一抗特异性很重要。

2. 间接ELISA检测

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原理:将抗原直接固定在微孔板上,首先将不带有标记的一抗加入微孔板,与板内抗原特异性结合,接着加入酶标二抗识别一抗,最后加入酶反应的底物进行显色,显色信号值与所结合的分析物量成正比。

优缺点:优点是经济灵活、敏感性强、标记抗体少,且单个二抗可用于检测不同的一抗,同时能保留一抗的最大免疫反应性;缺点是可能存在交叉反应,且可能导致非特异性染色,而相比直接法,操作流程更长。

适用范围:常用于测定内源性抗体。

注意事项:实验过程中的抗原纯度很重要,并注意正常血清中所含高浓度的非特异性抗体的干扰。

3. 双抗夹心ELISA检测

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原理:双抗夹心法分为双抗体夹心法和双抗原夹心法。主要是将捕获抗体包被在微孔板上,加入样品后,捕获抗体与样本结合,然后再加入酶标记的检测抗体,形成夹心抗体对,最后加入酶反应的底物进行显色反应,显色产生信号值与所结合的分析物量成正比。

 优缺点:优点是具有高特异性和高灵敏度,能够与复杂的样品基质兼容;缺点是抗原必须拥有两个以上结合位点,且实验流程较长。

 适用范围:常用于确定生物样本中的分析物浓度。

 注意事项:不能检测小分子抗原或半抗原,需要甄选抗体对,避免交叉反应或竞争相同的抗原结合位点。

4. 竞争性ELISA检测

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原理:将捕获抗体包被在微孔板上,加入标记的抗原,该抗原可与样本中的目标抗原竞争性结合捕获抗体,样品中存在的抗原越多,能够与捕获抗体结合的标记抗原就越少,加入底物并产生信号,信号值与样品中存在的蛋白量成反比。

优缺点:优点是具有高特异性,可以特异性地捕获和检测抗原,还能够定量小分子;缺点是整体的敏感性和专一性都较差。

适用范围:常用于定量检测含有低分析物浓度的样品、免疫应答等。

注意事项:适用于小分子和半抗原检测,如PEG2、Cortisol。



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