给药是动物实验中非常重要的部分,准确的实验结果离不开科学规范的给药方法。今天为大家介绍常见的6种大小鼠给药方法。
一、口鼻给药(Intranasal,IN)
具体方法:
1、先用移液枪吸取药物待用
2、小鼠:左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。
大鼠:用左手食指和中指放在颈背部的两侧,拇指和无名指从大鼠腋下穿至大鼠放在胸前,右手夹住左右后肢肢抓起来。右手持移液器将药物慢慢滴到小鼠鼻孔上,待小鼠吸入鼻腔(注意药剂会消失在鼻孔里),每次药液应无菌且量不多。
3、重复上述步骤,直到所需的量完成为止。
4、滴鼻完成后,将小鼠保持滴鼻的姿势,防止药液流出影响实验数据可靠性。
注意事项:
1、滴鼻时应缓缓滴下,一定要等到小鼠将前一滴药液吸入后,再开始滴注下一滴。
2、滴注时需做到少量多次,速度太快易引起小鼠死亡。
3、药液需要无菌,避免引起肺部感染。
二、灌胃(Intragastric,IG)
具体方法:
1、选择一个适当大小的口服灌胃针,这种针的末端是球状的,便于防止它们进入气管。
2、所需的长度应需要从举起动物的嘴角开始测量,胃针的球头应达到动物最后一根肋骨(针规由动物的体重决定)。
4、把动物的头和身体控制在一条直线上。
5、将针的球形尖端插入动物的嘴里,盖住舌头。针心头就位后,把针头和注业射器拿起来,轻轻压在上颗上,让动物的鼻子朝向上。
6、继续穿针,直到达到预定的距离。针应容易通过,动物不应息或窒息。
7、注道射药物应该流入胃部。如果有抵抗或动物息窒息,或动物变成青紫色,应立即停止操作把针拔掉,情况严重需安乐死。
注意事项:
1、只能够对被抓取的、清醒的动物进行灌胃。
2、在大鼠身上,当针》头穿过喉咙后部时可能需要稍微改变方向,有任何阻力都表明需要调整位置。
三、肌肉注射(Intramuscular,IM)
具体方法:
1、肌肉注射一般在动物麻醉后进行,或者由两个人操作,一人固定动物,另一人执行注道射。
2、一般注射部位为大腿内侧或外侧肌肉。
3、酒精消毒注射部位后,左手抓住后肢,右手持针插入肌肉,试着回抽针筒,如有血液或液体回流,表示不适当,需重新插入。
4、确定针头插入肌肉后,慢慢将药剂推入,推入的速度应避免太快,以免组织损伤。
注意事项:
1、正确抓取动物,确保动物的一个后腿是自由的,稳定地注射。
2、针应该垂直于动物的皮肤插入。
3、不要注射到后面的肌肉群,因为可能会损伤坐骨神经,
4、如果小鼠要接受多次肌肉注射,要双腿交替注射。
四、皮下注射(Subcutaneous,SQ)
具体方法:
1、先抓取固定小鼠,剃去注射部位毛发并用酒精消毒。
2、用左手拇指与食指捏起小鼠背部皮肤,右手手持注射器,针头斜面朝上与皮肤呈30-45°角刺入帐篷状皮肤。
3、刺入后针头轻轻左右摆动(易摆动说明已刺入皮下),再轻轻抽吸,如无回血,可缓慢地将药物注入皮下(推药过程中能明显观察到注射部位鼓起一小包,小包一定时间可消失)
4、注遛射完拔出针头后用无菌棉签压住进针部位片刻以免药物外漏。
注意事项:
1、正确抓取动物,动物必须受到足够宽松的抓握,这样皮肤才能活动起来。
2、如果动物要接受多次皮下注射,可交替注射部位。
五、皮内注射(Intradermal Injections,ID)
具体方法:
1、固定小鼠后,将注射部位毛发剃去,局部常规消毒。
2、左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧,在两指之间进行针头穿刺。
3、针头斜面朝上与皮肤呈大约30°角刺入,同时针头稍微上挑起并稍刺入,将药液注入皮内。
4、注射后皮肤出现小丘疹状降起并且比周围的皮肤白,且皮肤上的毛孔极为明显。
注意事项:
1、如果注射时感觉比较费力,说明注射正确。
2、如果感觉比较容易,说明已注入皮下,要拔出针头重新注射。
3、不要回抽注射器。
4、注射剂量:大鼠一般小于0.1mL/次,小鼠一般小于0.05mL/次。
六、尾静脉注射(Intravascular,V)
具体方法:
1、对于尾静脉注射,可使用保定袋或约束装置辅助操作。
2、把动物的尾巴放在灯下,或放在一个有保护的加热装置上。这将促进血管舒张,注射更容易。
3、用左手抓住动物的尾巴尖,拉直尾巴。
4、90°旋转尾部,尾静脉注射更容易。
5、用针以15-20°角从尾巴的远端开始接近尾巴
6、进行注射,成功的插入是没有阻力的,并且注射部位变苍白。
7、如果注射不成功,药剂将不容易推动,相反,尾部皮肤会变白。
注意事项:
1、注意不要让动物过热。清洁时要轻柔,避免擦伤皮肤。
2、静脉很浅,插入深度不宜超过斜面太多,注射开始尽可能远离根部。
3、注射前不要抽吸,注射后轻柔按压静脉穿刺部位可防止出血。
以上就是6种大小鼠给药方法,你学会了吗?